รายละเอียดสินค้า:
การชำระเงิน:
|
| วัสดุ: | ไพรเมอร์ | การปรากฏ: | ผงไลโอฟิไลซ์ |
|---|---|---|---|
| บรรจุภัณฑ์: | หลอด | การควบคุมคุณภาพ: | COA |
| •บริการมาตรฐาน: | ออกแบบฟรี | บริการสุดยอด: | การควบคุมตามสัดส่วน |
| แสงสูง: | Degenerate Primers DNA Oligo Synthesis,Degenerate Oligo Pool DNA Synthesis,Proportional Control Oligo Synthesis |
||
ไพรเมอร์ Degenerate Custom Custom Degenerate Oligo Pool การสังเคราะห์ DNA Oligo การสังเคราะห์
DNA oligos นั้นถูกสังเคราะห์ทางเคมีโดยมี Deoxyribonucleotides สี่ชนิดคือ A, T, C และ G ลำดับเหล่านี้ถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายในรูปแบบต่าง ๆ ในสาขาชีววิทยาเซลฟรีเชื่อมั่นในความสามารถของเราในการนำเสนอผลิตภัณฑ์โอลิโก DNA คุณภาพสูงแก่นักวิจัยทางวิทยาศาสตร์และลูกค้าอุตสาหกรรมทั่วโลกด้วยการผสมผสานของซินธิไซเซอร์ล้ำสมัยเทคโนโลยีการผลิตขั้นสูงและทีมสนับสนุนทางเทคนิคระดับมืออาชีพเราได้รับอัตราการกลายพันธุ์ต่ำอย่างต่อเนื่องเวลาตอบสนองระยะสั้นสั้นประสิทธิภาพค่าใช้จ่ายสูง
รหัสพันธุกรรมมีแนวโน้มที่จะเสื่อมซึ่งนำไปสู่การใช้ไพรเมอร์เสื่อมในการทดลอง PCR เพื่อแสดงยีนที่เฉพาะเจาะจงCELLFREE ให้ทั้งการออกแบบและการสังเคราะห์ของไพรเมอร์ที่เสื่อมสภาพเหล่านี้รวมถึงการสังเคราะห์โอลิโกพูลแบบกำหนดเองตามความต้องการ
บทนำ
ไพรเมอร์ degenerate ถูกกำหนดเป็น:“ การผสมของลำดับโอลิโกนิวคลีโอไทด์ซึ่งบางตำแหน่งมีจำนวนฐานที่เป็นไปได้ทำให้ประชากรของไพรเมอร์มีลำดับที่คล้ายกันซึ่งครอบคลุมชุดนิวคลีโอไทด์ที่เป็นไปได้ทั้งหมดตัวอย่างเช่น:
ATCGTT [GC] AAGT [AGC] ATC
หมายถึงชุดของไพรเมอร์ที่นิวคลีโอไทด์ที่เจ็ดและสิบสองเสื่อมลงจำนวนของความเสื่อมจะถูกกำหนดโดยจำนวนชุดไพรเมอร์ที่แตกต่างกันในการผสมตัวอย่างข้างต้นมีค่าความเสื่อมเท่ากับหก
รายการบริการ
| สัญลักษณ์ | ประเภทฐาน | อัตราส่วนมาตรฐาน | ราคา | |
| ระดับมาตรฐาน | ระดับสุพีเรีย | |||
| R | A, G | 50%: 50% | ฟรี | ขอใบเสนอราคา |
| Y | C, T | 50%: 50% | ||
| M | A, C | 50%: 50% | ||
| K | G, T | 50%: 50% | ||
| S | C, G | 50%: 50% | ||
| W | ที่ | 50%: 50% | ||
| H | A, C, T | 33%: 33%: 33% | ||
| B | C, G, T | 33%: 33%: 33% | ||
| V | A, C, G | 33%: 33%: 33% | ||
| D | A, G, T | 33%: 33%: 33% | ||
| ยังไม่มีข้อความ | A, C, G, T | 25%: 25%: 25%: 25% | ||
* ควรเปิดเผยสัดส่วนพื้นฐานที่ไม่ได้มาตรฐานอย่างชัดเจนเช่น N (20% A: 30% C: 40% G: 10% T)
การออกแบบไพรเมอร์ที่เสื่อมสภาพ
1) จัดลำดับกรดอะมิโนหลายชุดโดยใช้ซอฟต์แวร์ออนไลน์ฟรี
2) ตั้งเป้าพื้นที่ให้มีความยาวประมาณ 200-500 คู่สำหรับการขยาย PCR ที่เหมาะสม
3) วางตำแหน่งไปข้างหน้าและย้อนกลับไพรเมอร์ในภูมิภาคที่ได้รับการอนุรักษ์มากขึ้น - ยิ่งความเสื่อมน้อยลงเท่านั้น
4) รวมกรดอะมิโนระหว่าง 6 และ 7 ตัวในไพรเมอร์เท่ากับ ~ 15-20 คู่เบส
5) พยายามรวมกรดอะมิโนเมธิโอนีนและทริปโตเฟนซึ่งเขียนด้วยรหัสเดียว (รหัสนิวคลีโอไทด์สามตัวอักษร) และหลีกเลี่ยงกรดอะมิโน leucine, ซีรีนและอาร์จินีน
6) สำหรับขั้นตอนการโคลนที่ตามมาและเพื่อเพิ่มความยาวไพรเมอร์ (และอุณหภูมิการหลอม) เพิ่มหาง 5 '(6-9 คู่เบส) ที่มีไซต์เอนไซม์ที่ จำกัด
7) หากมีความเสื่อมอย่างสมบูรณ์ (ไม่มีการจับคู่ระหว่างสปีชีส์ใด ๆ ) ให้พิจารณาใช้ฐาน inosine (คล้ายกับโครงสร้าง guanine) เนื่องจากสามารถจับคู่กับฐานทั้งสี่ได้แม้ว่าจะจับกับไซโตซินเป็นพิเศษก็ตามอีกทางหนึ่งให้แทรก N สำหรับฐาน aNy เพื่อให้แน่ใจว่าความเข้มข้นของแต่ละฐานที่ตำแหน่งนั้นในไพรเมอร์ผสม
8) หลีกเลี่ยงความเสื่อมที่จุดประสงค์ 3 '(นี่จะไม่ใช่สถานที่ที่ดีในการแทรก inosine)
